-
Notifications
You must be signed in to change notification settings - Fork 0
/
confidence_interval_plot.R
280 lines (225 loc) · 13.3 KB
/
confidence_interval_plot.R
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
53
54
55
56
57
58
59
60
61
62
63
64
65
66
67
68
69
70
71
72
73
74
75
76
77
78
79
80
81
82
83
84
85
86
87
88
89
90
91
92
93
94
95
96
97
98
99
100
101
102
103
104
105
106
107
108
109
110
111
112
113
114
115
116
117
118
119
120
121
122
123
124
125
126
127
128
129
130
131
132
133
134
135
136
137
138
139
140
141
142
143
144
145
146
147
148
149
150
151
152
153
154
155
156
157
158
159
160
161
162
163
164
165
166
167
168
169
170
171
172
173
174
175
176
177
178
179
180
181
182
183
184
185
186
187
188
189
190
191
192
193
194
195
196
197
198
199
200
201
202
203
204
205
206
207
208
209
210
211
212
213
214
215
216
217
218
219
220
221
222
223
224
225
226
227
228
229
230
231
232
233
234
235
236
237
238
239
240
241
242
243
244
245
246
247
248
249
250
251
252
253
254
255
256
257
258
259
260
261
262
263
264
265
266
267
268
269
270
271
272
273
274
275
276
277
278
279
280
########################################################################################################################################
#Script for drawing a graph with datapoints + 95% CI
########################################################################################################################################
# Le fichier d'entrée contient 3 colonnes.
# 1ere colonne : les noms des lignées des plantes étudiées (plant_line) (text)
# 2eme colonne : le facteur de groupage (ex : condition de culture, jour de la manip....) (grouping_factor)(text)
# 3eme colonne : la valeur mesurée (mesured_value)(numeric)
########################################################################################################################################
# 1. Données à analyser
########################################################################################################################################
# Choisir le répertoire de travail
setwd("PATH/TO/FILES")
# Initialisation de la variable DATA par le fichier contenant les données à analyser
DATA <- "file.xlsx"
########################################################################################################################################
# 2. Variables de personnalisation du graphique
########################################################################################################################################
# Définir la couleur des points
COULEUR <- "#d9c396"
# Palette de couleur pour les intervalles de confiance
PALETTE <- "Paired"
# Orientationd des étiquettes de l'axe X.
# Pour des étiquettes horizontales : angle = 0, vjust = 0, hjust=0.
# Pour des étiquettes tournées de 90° : angle = 90, vjust = 0.5, hjust=1
orientation_xlabels <- theme(axis.text.x = element_text(angle = 0, vjust = 0, hjust=0.5))
# Position et aspect des marqueurs de groupe
# Les valeurs par défaut produise un graph ou les parties du graph sont séparées avec le facteur
# de groupement dans un cadre à l'intérieur du graph.
# On peut modifier ainsi :
# parties jointives : panel.spacing = unit(0, "lines")
# Pas de cadre autour du facteur de groupement : strip.background = element_rect(colour=NA, fill=NA
# facteur de groupement à l'extérieur du graph :strip.placement = "outside"
strip_pos <- theme(panel.spacing = unit(0.3, "lines"),
strip.background = element_rect(colour="black", fill=NA),
strip.placement = "inside")
########################################################################################################################################
# 3. Installation et appel des paquets
########################################################################################################################################
if (!require(ggbeeswarm)) { install.packages("ggbeeswarm") }
if (!require(Rmisc)) { install.packages("Rmisc") }
if (!require(ggplot2)) { install.packages("ggplot2") }
if (!require(RColorBrewer)) { install.packages("RColorBrewer") }
if (!require(dplyr)) { install.packages("dplyr") }
if (!require(rcompanion)) { install.packages("rcompanion") }
if (!require(rstatix)) { install.packages("rstatix", repos = "https://cloud.r-project.org") }
if (!require(readxl)) { install.packages("readxl") }
library(ggplot2) # Pour faire le graph
library(ggbeeswarm) # pour la fonction geom_quasirandom
library(Rmisc) # pour la commande summarySE
library(RColorBrewer) # pour la définition des couleurs
library(rstatix) # pour les tests statistiques
library(rcompanion) #pour le calcul de l'intervalle de confiance pour les données non paramétriques
library(dplyr) # pour les fonction %>%, group_by, summarise, select
library(readxl) # Pour charger les données au format excel
########################################################################################################################################
# 4. Appel des fonctions utilisées dans le script
########################################################################################################################################
#=======================================================================================================================================
# Fait le test de Kruskal-Wallis
# Retourne TRUE si au moins une médianes est significativement différente
#=======================================================================================================================================
check_kruskal <- function(kruskal_pval) {
flag_kruskal <- FALSE
for (i in 1 : nrow(kruskal_pval)) {
if (kruskal_pval$p[i] < 0.05) {
print (paste0("Le test de Kruskall Wallis compare les médianes, la pvalue pour le groupe ", kruskal_pval$grouping_factor[i] , " est < 0.05 ce qui indique qu’au moins 1 des médianes est différentes des autres, on réalise un test post hoc de Dunn"))
flag_kruskal <- TRUE
} else {
print (paste0("Le test de Kruskall Wallis compare les médianes, la pvalue pour le groupe ", kruskal_pval$grouping_factor[i] , " est > 0.05 ce qui indique qu’il n'y a pas de différence entre les médianes"))
}
}
return(flag_kruskal)
}
#=======================================================================================================================================
# Fait le test de Dunn
# retourne les pvalue dans un dataframe
#=======================================================================================================================================
test_dunn <- function() {
pval <- as.data.frame(df %>% group_by(grouping_factor) %>% dunn_test(mesured_value ~ plant_line, p.adjust.method = "BH"))
print(df %>% group_by(grouping_factor) %>% dunn_test(mesured_value ~ plant_line, p.adjust.method = "BH"))
return(pval)
}
#=======================================================================================================================================
# Réalise le graphique lorsque les données suivent une loi normale. L'intervalle de confiance est
# construit autour de la moyenne
#=======================================================================================================================================
plot_normal <- function(df, my_colours, real_colname_df, my_summary) {
p <- ggplot(data=df, aes(x=plant_line, y=mesured_value)) +
geom_quasirandom(dodge.width=0.8,alpha = 0.6, colour=COULEUR) +
geom_pointrange(data=my_summary,
aes(ymin=mesured_value - ci, ymax=mesured_value + ci, color=plant_line),
position=position_dodge(width=0.8)) +
scale_colour_manual(values=my_colours) +
scale_x_discrete(name = real_colname_df[1]) +
scale_y_continuous(name = real_colname_df[3],
limits=c(0, max(df$mesured_value) + 0.1 * (max(df$mesured_value))),
expand = c(0, 0)) +
facet_wrap(~ grouping_factor, strip.position = "bottom", scales = "free_x") +
theme_classic() +
strip_pos +
orientation_xlabels +
theme(legend.title=element_blank())
print(p)
}
#=======================================================================================================================================
# Réalise le graphique lorsque les données ne suivent pas une loi normale. L'intervalle de confiance est
# construit autour de la médiane
#=======================================================================================================================================
plot_not_normal <- function(df, my_colours, real_colname_df, conf_int) {
# La colonne "median" doit porter le nom "mesured_value" pour le ggplot
names(conf_int)[4] <- "mesured_value"
p <- ggplot(data=df, aes(x=plant_line, y=mesured_value)) +
geom_quasirandom(dodge.width=0.8, alpha = 0.6, colour=COULEUR) +
geom_pointrange(data=conf_int, aes(ymin=Percentile.lower, ymax=Percentile.upper,
color=plant_line), position=position_dodge(width=0.8)) +
scale_colour_manual(values=my_colours) +
scale_x_discrete(name = real_colname_df[1]) +
scale_y_continuous(name = real_colname_df[3],
limits=c(0, max(df$mesured_value) + 0.1 * (max(df$mesured_value))),
expand = c(0, 0)) +
facet_wrap(~ grouping_factor, strip.position = "bottom", scales = "free") +
theme_classic() +
strip_pos +
orientation_xlabels +
theme(legend.title=element_blank())
print(p)
}
#=======================================================================================================================================
# Vérifie la normalité des données. Sort de la boucle si au moins un des groupes de données ne suit
# pas une loi normale.
#Retourne TRUE si les données suivent une loi normale
#=======================================================================================================================================
check_normality <- function(shapiro_df) {
# On suppose que les données sont normales
flag_normal <- TRUE
for (i in 1 : nrow(shapiro_df)) {
if(shapiro_df[i, 4] > 0.05) {
# print(paste0("les données ",shapiro_df$grouping_factor[i],"-",
# shapiro_df$plant_line[i], " suivent une loi normale"), quote = FALSE)
} else {
# print(paste0("les données ",shapiro_df$grouping_factor[i],"-",
# shapiro_df$plant_line[i], " ne suivent pas une loi normale"), quote = FALSE)
# En fait les données ne sont pas normales, pas besoin d'aller plus loin
flag_normal <- FALSE
break
}
}
return(flag_normal)
}
########################################################################################################################################
# 5. Corps du script
########################################################################################################################################
#Teste le type de données (txt ou xlsx) et réalise l'import en fonction
if(grepl("\\.txt$", DATA)) {
df <- read.table(DATA, header = TRUE, stringsAsFactors = TRUE, sep = '\t')
} else {
df <- read_excel(DATA, col_types = c("text", "text", "numeric"))
df[,1:2] <- lapply(df[,1:2], factor)
}
# Compte le nombre de colonnes et affiche un erreur s'il est différent de 3
if (ncol(df)!=3) {
print ("ERREUR : le nombre de colonnes n'est pas égal à 3")
stop()
}
# Sauvegarde des noms des colonnes du fichier d'entrée
real_colname_df <- colnames(df)
# Remplacement des nom des colonnes par les noms génériques
colnames(df) <- c("plant_line", "grouping_factor", "mesured_value")
# Define color
my_colours = brewer.pal(n = 9, PALETTE)[9:3]
# Determining data normality status
shapiro_df <- df %>%group_by(plant_line, grouping_factor)%>%
summarise(statistic = shapiro.test(mesured_value)$statistic,
p.value = shapiro.test(mesured_value)$p.value)
flag_normal <- check_normality(shapiro_df)
# Data treatement according to normality status
if(flag_normal == TRUE) {
print("Les données suivent une loi normale")
# Summary
my_summary <- summarySE(df, measurevar="mesured_value", groupvars=c("plant_line", "grouping_factor"))
# Plot
plot_normal(df, my_colours, real_colname_df, my_summary)
# Stats
anova_results <- df %>% group_by(grouping_factor) %>% anova_test(mesured_value ~ plant_line)
tukey_results <- df %>% group_by(grouping_factor) %>% tukey_hsd(mesured_value ~ plant_line)
# Sauver les fichiers
write.table(my_summary, file = "Summary.txt",
quote = FALSE, row.names = FALSE, sep = '\t')
write.table(anova_results, file = "Anova.txt",
quote = FALSE, row.names = FALSE, sep = '\t')
write.table(tukey_results[, c(1,3,4, 9, 10)], file = "Tukey.txt",
quote = FALSE, row.names = FALSE, sep = '\t')
#ggsave("Plot.svg", width=4, height=5)
} else {
print("Les données ne suivent pas une loi normale")
# Summary
my_summary <- groupwiseMedian(data = df,
var = "mesured_value",
group = c("grouping_factor", "plant_line"),
conf = 0.95,
R = 5000,
percentile = TRUE,
bca = FALSE,
digits = 3)
# Plot
plot_not_normal(df, my_colours, real_colname_df, my_summary)
# Stats
kruskal_pval <- (df %>% group_by(grouping_factor)%>%kruskal_test(mesured_value ~ plant_line)) %>% select(grouping_factor, p)
flag_kruskal <- check_kruskal(kruskal_pval)
if (flag_kruskal == TRUE) { pval_dunn <- test_dunn() }
# Sauver les fichiers
write.table(my_summary, file = "Summary.txt",
quote = FALSE, row.names = FALSE, sep = '\t')
write.table(kruskal_pval, file = "Kruskal.txt",
quote = FALSE, row.names = FALSE, sep = '\t')
write.table(pval_dunn[, c(1, 3, 4, 8, 9, 10)], file = "Dunn.txt",
quote = FALSE, row.names = FALSE, sep = '\t')
#ggsave("Plot.svg", width=4, height=5)
}
#Environnement
if (!require(devtools)) { install.packages("devtools") }
InfoSession <- devtools::session_info()
sink("InfoSession.txt")
print(InfoSession)
sink()